Monitoraggio e catture: tecniche e operatività in RARITY

Transcript

1 Laura Aquiloni Dipartimento di Biologia evoluzionistica, Università di Firenze (UNIFI) Monitoraggio e catture: tecniche e operatività in RARITY Descrizione del protocollo di monitoraggio decapodi previsto in RARITY: modalità e tempi; protocollo per la pulizia e disinfestazione del materiale da campo; protocollo per lo smaltimento del pescato; descrizione del protocollo di trappolaggio RARITY LIFE10 NAT/IT/ Obiettivi Contrastare la diffusione del gambero invasivo (Procambarus clarkii); Rafforzare la specie nativa (Austropotamobius pallipes complex); Emanare una normativa regionale. 1

2 Tempistica Durata progetto: 3 anni (1 Set Ago 14) Lavoro campo: ogni anno da aprile-settembre Area di lavoro Natural resource monitoring is the collection Monitoraggio delle risorse naturali è "la raccolta and analysis of repeated observations or measure- e l'analisi di osservazioni ripetute o di misura ments to evaluate changes in condition and menti per valutare cambiamenti nelle condizioni e progress toward meeting a management objective progresso verso conseguire un obiettivo di gestione (Elzinga et al. 1998:1). (Elzinga et al. 1998:1) 216 stazioni ripartite tra 15 collegi di pesca e Siti Rete Natura 2000 con un criterio proporzionale sulla lunghezza dei corsi d acqua Ogni stazione avrà un codice di riferimento: collegio di pesca (da 01 a 15) numero progressivo (da 001 a 216) stazioni in Rete Natura 2000 (RN) Rif RN 2

3 CRITERI per la scelta delle (216!) stazioni di campionamento Facilità di accesso al sito e di conduzione del lavoro per la sicurezza degli operatori Dati pregressi su caratteristiche ambientali e/o presenza di gamberi (sia autoctoni che alloctoni) Rappresentatività dell habitat: a parità dei precedenti criteri includere la stazione a maggiore naturalità EQUIPAGGIAMENTO un raccoglitore per ogni stazione di campionamento con le schede di campo da compilare: 3 schede monitoraggio decapodi (una per ogni anno di progetto), 3 schede popolazione (una per ogni anno di progetto); matite; due contenitori con etanolo per la raccolta di pereiopodi di A. pallipes e/o P. clarkii; un contenitore con etanolo per la raccolta di esemplari non identificati; carta assorbente e pennarello indelebile per marcature; nasse per la pesca e un adeguato numero di esche; sacchi neri per lo smaltimento delle esche; mezzo marinaio; stivali e guanti; macchina fotografica; cordino; 3 secchi; torcia; forbici; calibro; termometro da campo; contenitori per il trasporto di animali; disinfettante e nebulizzatore a spruzzo; guida sintetica delle attività di campo. Natural resource monitoring is the collection Monitoraggio delle risorse naturali è "la raccolta and analysis of repeated observations or measure- e l'analisi di osservazioni ripetute o di misura ments to evaluate changes in condition and menti per valutare cambiamenti nelle condizioni e 3

4 Monitoraggio decapodi PRIMO GIORNO GIORNI SUCCESSIVI Metodo di cattura: trappole Metodo Equipaggiamento richiesto Caratteristiche del sito Trappolaggio Nasse tipo bertovello, esche adeguate, corda, disinfettante, giubbotto salvagente, secchi, paletti. Laghi profondi, con molta vegetazione e visibilità limitata. Vantaggi Indipendente dal meteo; la trasparenza dell acqua non è un problema; può essere utilizzato durante tutto l anno e a ogni profondità (può richiedere una barca). Limitazioni/Svantaggi Ritorno al sito per il controllo delle trappole; i gamberi di piccole dimensioni possono scappare dalle trappole; le trappole vanno incontro a usura; cattura di specie non-target. ATTENZIONE: mantenere la trappola semi-emersa per permettere la sopravvivenza di specie non target (anfibi e rettili). 4

5 PROTOCOLLO OPERATIVO DEL TRAPPOLAGGIO CON ESCA PRIMO GIORNO Ore Arrivo alla stazione di campionamento Ore Inserimento esche nelle trappole, scelta del luogo più opportuno e posizionamento trappole nel corso d acqua Ore Foto sito e misura temperatura acqua Ore Compilazione prima parte scheda monitoraggio Tempo totale: 1h e 30 GIORNI SUCCESSIVI Ore Arrivo alla stazione di campionamento Ore Apertura trappole, identificazione specie, conteggio, marcatura animali (solo A) e loro rilascio nel sito, rimozione animali (solo P). Ore Compilazione seconda parte scheda monitoraggio Ore Cambio esca nelle trappole e posizionamento trappole nel corso d acqua Tempo totale: 2h ULTIMO GIORNO Ore Arrivo alla stazione di campionamento Ore Apertura trappole, conteggio individui, identificazione specie, misurazione individui (A e P*), prelievo zampe per genetica e compilazione scheda popolazione Rilascio A, rimozione e smaltimento P Ore Compilazione seconda parte scheda monitoraggio indicando i tempi reali necessari a campionare la stazione Tempo totale: 1h e 30 P* la scheda popolazione relativa a P. clarkii può essere compilata anche in laboratorio su animali scongelati Metodo di cattura: a mano Direzione flusso 200 m, 1 h Direzione operatori Metodo Ricerca a mano Equipaggiamento richiesto Stivali impermeabili, secchi con fondo in plexiglass o piccole faune box usate in acquariofilia, retini per acquari, disinfettante. Caratteristiche del sito Tratti poco profondi, rocciosi o con sponde compatte. Vantaggi Veloce; equipaggiamento necessario minimo; facilmente utilizzabile per campionamenti sotto rocce e pietre. Limitazioni/Svantaggi Limitato in acque profonde per l impossibilità di girare le pietre; l agitazione del fondo argilloso può rappresentare un problema; può essere un problema catturare gamberi che nuotano velocemente; metodo difficilmente standardizzabile perché dipendente dall abilità dell operatore 5

6 PROTOCOLLO OPERATIVO DELLE CATTURE A MANO PRIMO GIORNO Ore Arrivo alla stazione di campionamento Ore Foto sito e misura temperatura acqua Ore Compilazione prima parte scheda monitoraggio Ore Catture a mano con due operatori Ore Marcatura animali e rilascio (A), rimozione e smaltimento (P), prelievo zampe per analisi genetica (A e P) e compilazione seconda parte scheda monitoraggio Tempo totale: 2h GIORNI SUCCESSIVI Ore Arrivo alla stazione di campionamento Ore Catture a mano con due operatori Ore Marcatura animali e rilascio (A), rimozione e smaltimento (P), prelievo zampe per analisi genetica (A e P) e compilazione seconda parte scheda monitoraggio Tempo totale: 1h e 30 ULTIMO GIORNO Ore Arrivo alla stazione di campionamento Ore Catture a mano con due operatori Ore Misura animali (A e P*), prelievo zampe per analisi genetica (A e P) e compilazione scheda popolazione Rilascio A, rimozione e smaltimento P. Ore Compilazione seconda parte scheda monitoraggio indicando i tempi reali necessari a campionare la stazione Tempo totale: 2h P* la scheda popolazione relativa a P. clarkii può essere compilata anche in laboratorio su animali scongelati. Monitoraggio habitat SCHEDA MONITORAGGIO HABITAT RARITY LIFE10 NAT/IT/ Rif.. Data Ora Compilatore Parametri fisico-chimici: ph Conduttività (μs/cm) Corrente (m/s) Temperatura acqua ( C) Ossigeno (mg/l) Profondità (cm) Durezza carbonatica (mg/l) Data Ora Compilatore Parametri fisico-chimici: ph Conduttività (μs/cm) Corrente (m/s) Temperatura acqua ( C) Ossigeno (mg/l) Profondità (cm) Durezza carbonatica (mg/l) Data Ora Compilatore Parametri fisico-chimici: ph Conduttività (μs/cm) Corrente (m/s) Temperatura acqua ( C) Ossigeno (mg/l) Profondità (cm) Durezza carbonatica (mg/l) 6

7 Foto sito Monitoraggio decapodi 7

8 Prelievo campione per analisi genetica L ultimo giorno di campionamento nella stazione, da 20 individui maschi di entrambe le specie, l indigeno A. pallipes e l invasivo P. clarkii, dovrà essere prelevata una «zampa» dall ultimo paio di pereiopodi. Le zampe dovranno essere inserite in un apposito contenitore, uno per ciascuna specie presente nella stazione di campionamento. I contenitori dovranno contenere etanolo per conservare le zampe fino all analisi genetica. Gambero indigeno (Austropotamobius pallipes complex) Marcatura Misurazione CL Applicare una marcatura su tutti gli animali ogni volta che vengono catturati, anche se già marcati Misura del cefalotorace (CL), una trappola alla volta, fino ad un massimo di 50 individui 8

9 4 giorno La marcatura del gambero indigeno Asciugare bene con carta assorbente; Marcare con pennarello indelebile e resistente all acqua; Lasciare seccare qualche minuto. 1 giorno 2 giorno 3 giorno Scheda popolazione SCHEDA POPOLAZIONE RARITY LIFE10 NAT/IT/ Rif.. Data Compilatore Telefono pag. Gambero Indigeno (A. pallipes complex, A) Gambero Americano (P. clarkii, P) In questa scheda la specie è: A o P ID Sesso CL Chele Parassiti Uova (M, F) (mm) (2, 1, 0) (Sì, No) (Sì, No) Schiuse (Sì, No) Muta (Sì, No) Marcatura (disegno) Osservazioni IL GAMBERO INDIGENO (A) DEVE ESSERE MISURATO SUBITO E RILASCIATO NEL SITO DI CATTURA IL GAMBERO INVASIVO (P) DEVE ESSERE RIMOSSO DAL SITO E QUINDI PUÒ ESSERE MISURATO IN LABORATORIO ID Sesso CL Chele Parassiti Uova Schiuse Muta Marcatura Osservazioni (M, F) (mm) RARITY (2, 1, LIFE10 0) (Sì, NAT/IT/000239, No) (Sì, No) (Sì, corso No) di (Sì, formazione No) (disegno) personale ETP (azione A.3) 9

10 Disinfestazione materiale di campo spazzolare accuratamente il fango dall attrezzatura, e in particolare dalle suole di scarponi e stivali effettuare lavaggi con una soluzione di iodofori, ad una concentrazione di 500 ppm (prodotto commerciale Zoodyn, 28,6 ml/litro di acqua) lasciare asciugare completamente l attrezzatura al sole (48-72 ore). In alternativa, spruzzare ipoclorito puro sull attrezzatura La disinfestazione deve essere fatta SEMPRE prima di utilizzare la stessa attrezzatura in siti diversi Sintomi da peste del gambero presenza di numerosi individui morti; individui con comportamento anomalo (apatia, scarsa reattività, tendenza ad uscire dall acqua e a essere particolarmente attivi di giorno). RACCOGLIERE UN CAMPIONE 3-5 esemplari in contenitore in plastica, opportunamente etichettati con le informazioni su sito e data di raccolta, contenti ghiaccio oppure etanolo al 90%. CONSEGNARE IL CAMPIONE A: Dott. ssa Monia Cocchi presso l'izsve Friuli Venezia Giulia, Sez. diagnostica di Udine Via della Roggia, Basaldella di Campoformido (UD) Tel.: Fax:

11 11