VIE DI SOMMINISTRAZIONE

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Lidia Vanni
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1 VIE DI SOMMINISTRAZIONE

2 VIE ENTERALI Via orale Forme farmaceutiche: capsule, compresse, sciroppi, sospensioni, tisane, decotti, etc Nell animale da esperimento si usano prevalentemente le soluzioni Via sublinguale Forme farmaceutiche: compresse, granuli, spray Via rettale Forme farmaceutiche: suppositori, microclismi

prevalentemente le soluzioni Via sublinguale Forme farmaceutiche:

3 Per trattamenti cronici può essere preferibile l aggiunta del farmaco a cibo o acqua (possibili problemi: imprecisione della dose assunta; anoressia; palatabilità)

5 Volume max per un topo di 20-25g = 0.5 ml Volume max per un ratto di 250g = 1.0 ml Volume max per un coniglio di 2.5Kg: 7.5 ml

6 CATETERE INTRAORALE

8 VIE PARENTERALI Via intramuscolare Forme farmaceutiche: soluzioni, sospensioni Via endovenosa Forme farmaceutiche: soluzioni

9 ALTRE VIE DI SOMMINISTRAZIONE Via cutanea Forme farmaceutiche: pomate, creme, lozioni, etc. Iniezioni sottocutanee Forme deposito Pompe osmotiche a lento rilascio: posizionate sottocute Via dermica Forme farmaceutiche: Iniezioni intradermiche,

Iniezioni sottocutanee Forme deposito Pompe osmotiche a

10 Via mucosale Forme farmaceutiche: pomate, creme, lozioni, etc Via inalatoria Forme farmaceutiche: spray, aerosol, etc

11 Via intra-articolare antiinfiammatori Via intratecale Spazio subaracnoideo Cavità ventricolari epidurale

12 DOPO LA SOMMINISTRAZIONE IL FARMACO DEVE RAGGIUNGERE L ORGANO BERSAGLIO

13 PASSAGGIO ATTRAVERSO LE MEMBRANE ASSORBIMENTO PASSAGGIO dei FARMACI attraverso le BARRIERE CELLULARI 1) DIFFUSIONE attraverso i LIPIDI 2) DIFFUSIONE attraverso i PORI ACQUOSI 3) LEGAME ad un CARRIER di TRASPORTO POMPE 4) PINOCITOSI

DIFFUSIONE attraverso i LIPIDI 2) DIFFUSIONE attraverso i

14 SOLO IL FARMACO IN FORMA LIBERA RAGGIUNGE ORGANO BERSAGLIO Quota del farmaco libero SEDE D AZIONE

15 NELL ANIMALE DA ESPERIMENTO VIA ENDOVENOSA NEL CONIGLIO: la via di elezione è la vena marginale del padiglione auricolare. Si mette in evidenza per riscaldamento si ha la vasodilatazione del vaso che risulterà ben visibile

16 SOMMINISTRAZIONE ENDOVENOSA (coniglio) Volume max per un coniglio di 2.5Kg: ml

17 NEL RATTO: Vena caudale: l animale viene posto all interno di piccole gabbie di contenimento. Si scalda la coda con acqua tiepida in modo da evidenziare la vena. Si effettua la somministrazione per iniezione del preparato nella vena. Si utilizza per somministrazioni rapide Volume max per un ratto di 250g: 0.5 ml Volume max per un topo di 20-25g: 0.2 ml

Si effettua la somministrazione per iniezione del preparato nella vena.

19 Si può effettuare la somministrazione nelle vene più profonde come la vena femorale o quella giugulare, mediante l utilizzo di cateteri. Questi una volta inseriti nella vena vengono portati all esterno nella regione tra le scapole in modo che l animale non sia infastidito e si possa muovere liberamente. Volume max per un ratto 0.2 ml/100g

Questi una volta inseriti nella vena vengono portati all esterno nella regione tra

22 VIA INTRAPERITONEALE Questa somministrazione avviene iniettando la soluzione nel peritoneo si utilizzano degli aghi piccoli per evitare danni agli organi interni (aghi da 26 G). Bisogna evitare di inserire l ago nella parte medio bassa perché si potrebbe andare ad iniettare nella vescica Bisogna fare attenzione anche a non lesionare il fegato

23 RATTO Volume nel ratto= 3ml o 5ml/Kg

24 TOPO Volume max per un topo 0.5 ml/kg

25 VIA INALATORIA Somministrare farmaci gassosi e volatili, abbiamo un assorbimento rapido. Si utilizza in anestesia

26 SOMMINISTRAZIONE NEL SN Se il principio attivo che deve essere utilizzato non è lipofilo e non attraversa la BEE possiamo somministrarlo direttamente nel SN Le tecniche utilizzate: Microdialisi Iniezione mediante microiniettori

27 SONDA VERTICALE PER MICRODIALISI

28 Fibra per la microdialisi in acuto

29 cannula guida Fibra per la microdialisi in cronico

30 iniettore

31 APPARECCHIO STEREOTASSICO

32 SOMMINISTRAZIONE SOTTOCUTANEA Attraverso l utilizzo di un ago da 26 G si inietta sottocute un volume di 1ml/Kg di soluzione

34 Prelievo Ematico -prelievo terminale= si effettua quando occorrono volumi di sangue elevati e l animale può essere sacrificato Può avvenire attraverso: La vena caudale L aorta La vena giugulare La carotide La decapitazione

35 -prelievo non terminale si effettua quando è necessario un monitoraggio nell arco del tempo un singolo prelievo oppure prelievi multipli. Nel caso del singolo prelievo possiamo prelevare nello stesso momento fino al 15% del volume totale di sangue corporeo,senza creare delle alterazioni nello stato di benessere dell animale(deve avvenire a distanza minima di 3-4 settimane). Nel caso del prelievo multiplo la percentuale è del 1% e garantisce il benessere dell animale,e il sangue può essere prelevato ogni 24 ore.

36 Le vie di elezione per questo tipo di prelievi sono: Vena caudale = nel topo,ratto, gerbillo. Vena giugulare = nel ratto per prelievi multipli. Vena auricolare = usato per animali che non possiedono la coda.

37 Anestesia per animali da esperimento L anestesia generale, si ottiene attraverso l utilizzo di: -Barbiturici associati ai miorilassanti come le benzodiazepine e agli analgesici -Cloralio idrato -Ketamina -Equitesin Via di somministrazione intraperitoneale

38 Anestetici volatili per inalazione ANESTESIA -breve termine = dura circa 30 minuti -medio termine =dura massimo 120 minuti -lungo termine =oltre i 120 minuti -sedazione: si utilizza quando si deve fare un operazione rapida, non particolarmente dolorosa, più che altro stressante.

39 Metodi di Eutanasia Metodo Fisico = utilizzati quando l anestesia mediante agenti chimici potrebbe interferire sulla nostra indagine Metodo Chimico = si utilizzano gli stessi anestetici usati in anestesia ma in dosi massicce, s induce un overdose che determina inizialmente la sedazione e poi la morte.

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