Tripidi vettori su peperone: distribuzione, pericolosità e strategie di difesa Luciana Tavella Dipartimento di Scienze Agrarie, Forestali e Alimentari (DISAFA) Università degli Studi di Torino
Sin dall introduzione in Italia (Rampinini, 1987) Frankliniella occidentalis è stata oggetto di ricerche su bioetologia e danni (Arzone et al., 1989) limitatori naturali
Su peperone, danno diretto causato dall attività trofica: depigmentazioni e argentature
METODI DI LOTTA lotta chimica difficoltosa: uova endofitiche stadi pupali riparati nel suolo adulti meno sensibili ai fitofarmaci rapido sviluppo di resistenze problemi di residui lotta biologica efficace nemici naturali, tra cui i predatori: - acari fitoseidi gen. Amblyseius - eterotteri antocoridi gen. Orius
lotta biologica efficace lotta chimica spesso difficoltosa ma i tripidi sono vettori di tospovirus, tra cui Tomato spotted wilt tospovirus (TSWV) è il più temuto su pomodoro e peperone primo vettore accertato Thrips tabaci oggi vettore più efficiente Frankliniella occidentalis (trasmissione epidemica nei nostri areali) trasmissione di TSWV in laboratorio con una efficienza: da 0 a 17% T. tabaci da 62 a 96% F. occidentalis (Tedeschi et al., 2001; Tavella et al., 2002; 2004)
In Piemonte, varietà di peperone locali rinomate per la qualità, ma altamente suscettibili al virus
coltivazioni di peperone sempre più soggette ad attacchi di TSWV generalmente coltivate varietà suscettibili non varietà resistenti a TSWV (per presenza del gene dominante Tsw derivato da Capsicum chinense) disponibili in commercio anche se ormai selezionati isolati in grado di superare la resistenza (RB), trasmessi con elevata efficienza da F. occidentalis (Roggero et al., 1999; 2002)
Rilevamento di tripidi vettori e TSWV in campo diagnosi in loco con test lateral-flow distribuzione e andamento di popolazione dei vettori e diffusione della virosi in campo relazione TSWV piante infestanti nell appezzamento ricerca delle cause delle gravi infezioni, in particolare la provenienza dell inoculo iniziale?? piantine infette da vivaio infestanti serbatoio e/o forme svernanti di tripidi infetti
indagini in aziende di peperone per rilevare gli andamenti di tripidi e Orius spp.
indagini in aziende di peperone per rilevare gli andamenti di tripidi e Orius spp. anno varietà località az. 1^ rilievo % p.te infette Carmagnola (TO) 1 23-giu 80.0%, Corno Carmagnola (TO) 2 - - 2005 Carmagnola (TO) 3 18-ago 0.1%, Levaldigi (CN) 4 18-lug 1.0%, Cuneo Bra (CN) 5 25-mag 30.5%, Boves (CN) 6 6-lug 0.9%, 2006 Corno Carmagnola (TO) 2 20-lug 41.5%, Carmagnola (TO) 3 22-ago 0.8%, Cuneo Boves (CN) 6 - - Boves (CN) 7 31-lug 0.3%, 2007 Corno Carmagnola (TO) 2 - - Cuneo Boves (CN) 7 19-giu 4.5%,
azienda 1: infezione precoce, subito estesa stimata a 80% a fine stagione (non raccolto) valori massimi di infestazione: 3,4 tripidi/fiore a inizio agosto, soprattutto F. occidentalis
azienda 5: infezione molto precoce, fino a 30% a fine stagione valori massimi di infestazione: 14,6 tripidi/fiore a inizio agosto, con presenza costante di F. occidentalis
in caso di infezione intervenire tempestivamente sul vettore per contenere la virosi es. azienda 7: 60 m 60 m legenda: p.te sane (1=3/4 p.te) p.te infette al 19/06 p.te infette al 11/07 p.te infette al 09/08 2 trattamenti con spinosad (20/06 e 06/07) + rilascio di Orius spp.
se non disturbati da trattamenti, Orius spp. controllano i tripidi già con un rapporto preda : predatore = 50 : 1 introduzione Orius spp. meno influente di gestione strategie di difesa salvaguardia specie spontanee
precocità infezioni di TSWV più gravi apparentemente no infestanti serbatoio e/o forme svernanti di tripidi infetti origine soprattutto da materiale vivaistico: CONTROLLO!!!
azienda 2: nel 2006 infezione oltre 40% a fine stagione Infestanti: nessuna pianta infetta nessun tripide infettivo indagini a fine coltura lateral flow su infestanti rimaste dopo la coltura (cardo, ortica, rovo, Rumex, tarassaco): negativo prima della messa a dimora raccolti e saggiati 103 F. occidentalis (da ranuncolo) e 100 T. tabaci (da camomilla): negativi
no infezione da TSWV nonostante livelli di infestazione anche elevati (come rilevato con le trappole cromotattiche adesive azzurre)
100 90 80 70 60 50 40 30 20 10 F. occidentalis T. tabaci totale 12000 10000 8000 6000 4000 2000 0 0 % 15 giu 20 giu 15 giu 27 giu 20 giu 6 lug 27 giu 11 lug 17 lug 25 lug 3 ago 9 ago 16 ago 23 ago 5 set 13 set 20 set totale 6 lug 11 lug 17 lug 25 lug 3 ago 9 ago 16 ago 23 ago 5 set 13 set 20 set 42 36 30 24 18 12 6 0 n. medio tripidi (± e.s.) per 8 cm 2
piantine sane da vivaio eliminare piante infestanti intervenire tempestivamente al primo rilevamento di infezioni in campo
Prove insetticide su tripidi: obiettivi chiarire i dubbi sull efficacia di alcuni prodotti insetticidi utilizzati durante la stagione prelievo 900 Frankliniella occidentalis in un azienda di Bra
Prove insetticide su tripidi: materiali e metodi Metodo TIBS provette trattate con insetticida riempite con insetticida per 4 h; 5 diluizioni successive 1:2 (d.e. centrale); svuotate e lasciate asciugare per 1 notte; 10 tripidi inseriti in ciascuna provetta; controllo mortalità tripidi dopo 24 e 48 h.
Prove insetticide su tripidi: risultati 100% 90% 80% 70% 60% 50% 40% 30% 20% 10% 0% P1 prodotto p.a. P2 P3 P4 P5 Pickill abamectina dose etichetta 75 ml/hl Pickill (abamectina) tot morti 48 h test 1 test 2 tot morti 24 h sigla dose (ml/l) P1 0,1875 5 P2 0,375 5 P3 0,75 5 P4 1,5 5 P5 3 5 n. rip. ANOVA p>0,05
Prove insetticide su tripidi: risultati 100% 90% 80% 70% 60% 50% 40% 30% 20% 10% 0% R1 prodotto p.a. R2 R3 R4 R5 Rufast acrinatrina dose etichetta 80 ml/hl T1 Rufast (acrinatrina) T2 tot morti 48 h tot morti 24 h sigla dose (ml/l) R1 0,2 5 R2 0,4 5 R3 0,8 5 R4 1,6 5 R5 3,2 5 n. rip. ANOVA p>0,05
Prove insetticide su tripidi: risultati 90% 80% 70% 60% 50% 40% 30% 20% 10% 0% S1 prodotto p.a. 100% Success (spinosad) b B S2 A A A A a a a a S3 S4 S5 Success spinosad dose etichetta 100 ml/hl T1 T2 tot morti 48 h tot morti 24 h sigla dose (ml/l) S1 0,25 5 S2 0,50 5 S3 1,00 5 S4 2,00 5 S5 4,00 5 n. rip. ANOVA p>0,05; test di Tukey
Prove insetticide su tripidi: obiettivi chiarire i dubbi sull efficacia di alcuni prodotti insetticidi utilizzati durante la stagione prelievo 600 Frankliniella occidentalis in un azienda di Carmagnola gravemente colpita da TSWV
90% 80% 70% 60% 50% 40% 30% 20% 10% 0% Prove insetticide su tripidi: risultati prodotto Laser Success p.a. spinosad spinosad dose etichetta 20 ml/hl 100% Laser + Success (spinosad) L1 L2 L3 L4 L5 S1 ANOVA p>0,05; test di Tukey b B b AB ab A S2 S3 S4 S5 T1 a A a A T2 100 ml/hl tot morti 48 h tot morti 24 h sigla dose (ml/l) L1 0,05 5 L2 0,10 5 L3 0,20 5 L4 0,40 5 L5 0,80 5 S1 0,25 5 S2 0,50 5 S3 1,00 5 S4 2,00 5 S5 4,00 5 n. rip.
Prove insetticide su tripidi: conclusioni scarsa efficacia di alcuni insetticidi: problemi di somministrazione + diminuzione efficacia dovuta all eccessiva reiterazione attenzione all insorgenza fenomeni di resistenza!!!
Prove di tossicità su Orius spp.: obiettivi valutare la tossicità di alcuni prodotti comunemente impiegati verso Orius spp. spontanei prelievo di 300 individui di Orius spp. su infestanti presso il CReSO di Boves metodo TIBS: 3 individui/provetta
Prove di tossicità su Orius spp.: obiettivi A 100% Orius spp. 90% 80% 70% 60% 50% 40% 30% 20% 10% 0% a Karate A a Rufast A ab Pickill ANOVA p>0,05; test di Tukey prodotti alla dose di etichetta 5 ripetizioni prodotto 2 prove A bc Success Laser bc A cd Trebon B Neemazal d C d testimone C tot morti 48 h tot morti 24 h
Numero medio di Orius in 5 fiori prima dell intervento insetticida o del rilascio di Orius, e differenza ( ) fra i valori post- e pre-trattamento. Str. 2 Str. 1 Pepp. 2 Pepp. 1 A.i. spray/ Pre-treatment sampling post- pre-treatment sampling Orius release total adults nymphs d 1 total adults nymphs d 2 release 5 May 0.00 0.00 0.00 1 +0.67 +0.00 +0.67 7 release 3 Jun 0.25 0.00 0.25 8-0.08 +0.17-0.25 4 pirimicarb 10 Jun 0.17 0.17 0.00 3 +0.00-0.17 +0.17 4 spinosad 15 Jun 0.17 0.00 0.17 1 +1.92** +0.25 +1.67* 6 spinosad 24 Jun 2.08 0.25 1.83 3-0.67 +0.33-1.00 5 abamectin 1 Jul 1.42 0.58 0.83 2-1.00** -0.42-0.58* 4 spinosad 8 Jul 0.42 0.17 0.25 3 +0.42 +0.17 +0.25 6 release 26 May 0.07 0.07 0.00 1 +0.00 +0.00 +0.00 5 spinosad 28 Jun 0.47 0.27 0.20 5-0.20-0.20 +0.00 2 release 7 Jul 0.73 0.00 0.73 1 +0.33 +0.33 +0.00 6 etofen. 14 Jul 1.07 0.33 0.73 1-0.93** -0.20-0.73** 5 etofen. 24 Jul 0.13 0.13 0.00 5-0.07-0.07 +0.00 2 spinosad 29 Jul 0.07 0.07 0.00 3-0.07-0.07 +0.00 4 release 22 Jun 0.27 0.07 0.20 6 +0.40 +0.20 +0.20 1 spinosad 1 Jul 0.40 0.40 0.00 1-0.07-0.13 +0.07 6 azadir. 23 Jul 0.62 0.42 0.20 1-0.15-0.22 +0.07 5 etofen. 22 Aug 2.13 1.00 1.13 4-1.93** -0.87** -1.07** 3 release 1 Jun 0.28 0.00 0.28 1 +0.09 +0.09 +0.09 7 etofen. 28 Jun 0.44 0.11 0.33 5-0.44-0.11-0.33 2 λ-cyhal. 2 Aug 1.11 0.11 1.00 5-1.11** -0.11-1.00** 2 * P<0,05 e ** P<0,01 fra campionamento pre- e post-trattamento (ANOVA)
tossicità di spinosad in condizioni di laboratorio più elevata che in condizioni di campo insetticidi a basso rischio per programmi IPM? molto tossico per O. laevigatus nei biosaggi di laboratorio: -Van de Veire et al., 2002 -Biondi et al., 2012 non tossico per O. insidiosus in campo e serra: -Funderburk et al., 2000 -Studebaker & Kring, 2003
Grazie per l attenzione!