TECNICHE ELETTROFORETICHE

TECNICHE ELETTROFORETICHE

TECNICHE ELETTROFORETICHE DEFINIZIONE DI ELETTROFORESI Composto da elettrico [voce del lat. scientifico ("electricus è attribuito a W. Gilbert, autore del De Magnete, 1600), (gr. elektron, ambra)] + foresi dal gr. phoresis, trasporto. UN CENNO STORICO La prima metodica elettroforetica è stata messa a punto, nel 1937, da Arne Tiselius, un pioniere in questo campo, premio Nobel nel 1948, ed è stata definita elettroforesi in fase libera PRINCIPIO DELL ELETTROFORESI Migrazione, attraverso un mezzo liquido e/o solido, e sotto l impulso di un campo elettrico, di particelle dotate di cariche, ioni o polielettroliti

TECNICHE ELETTROFORETICHE Si distinguono, in generale, metodi frontali, in cui la separazione avviene in soluzione libera, e metodi zonali, che si avvalgono dell utilizzo di mezzi solidi, porosi ed inerti, come carta, gel o acetato di cellulosa. Molte molecole di interesse biologico possiedono gruppi ionizzabili e, quindi, ad un opportuno valore di ph, sono presenti in soluzione come specie elettricamente cariche Sotto l influenza di un campo elettrico queste molecole cariche migrano verso il catodo o l anodo, a seconda che possiedano una carica positiva (cationi) o negativa (anioni)

TECNICHE ELETTROFORETICHE Parametri chiave L elettroforesi è, dunque, il processo per cui molecole cariche si separano in un campo elettrico a causa delle loro diverse mobilità I fattori che influenzano la mobilità di una molecola in un campo elettrico comprendono : la carica della molecola (q) (Coulomb) il gradiente di potenziale del campo elettrico (E), dato dalla ddp tra i due elettrodi diviso la distanza in cm tra gli stessi (V cm -1 ) la resistenza di attrito del mezzo di supporto (f) Il prodotto dei parametri E e q (E x q) fornisce la forza, misurata in Newton, che spinge una molecola di carica q verso un elettrodo di carica opposta

TECNICHE ELETTROFORETICHE La forza frizionale (f), che rallenta il movimento della molecola carica, dipende dalle dimensioni della molecola, dalla sua forma, dalle dimensioni dei pori del mezzo nel quale avviene l elettroforesi e dalla viscosità del tampone La velocità (v) di una molecola carica che si sposta in un campo elettrico è data, dunque, dalla seguente equazione: v Eq f Da tale equazione si evince che, a parità di tutte le altre condizioni, cioè E ed f, la velocità di migrazione di una particella in un campo elettrico dipenderà dalla sua carica elettrica q.

TECNICHE ELETTROFORETICHE

TECNICHE ELETTROFORETICHE

TECNICHE ELETTROFORETICHE Mobilità elettroforetica Comunemente, non si fa riferimento alla velocità di migrazione di una particella nel campo elettrico, ma alla sua mobilità elettroforetica, indicata con μ e pari a : v E ( cm / sec V cm 2 cm sec V cm 2 sec 1 V 1 ) definita come la velocità, in cm/sec, in un campo elettrico unitario: Quindi, la mobilità è indipendente dal campo elettrico, ma dipende (a parità di altre condizioni) dalla struttura intrinseca della molecola (carica, dimensioni, forma, PM) q f

TECNICHE ELETTROFORETICHE Quindi, la migrazione è DIRETTAMENTE proporzionale alla carica netta di una molecola, (che dipende dal proprio punto isoelettrico e dal ph del mezzo), ed INVERSAMENTE proporzionale alle dimensioni ddp - + + + + + + + + - - - - - - -

TECNICHE ELETTROFORETICHE ELETTROFORESI ZONALE Le particelle migrano e si separano, fra i pori di un supporto solido inerte, in base alla diversa mobilità e si raggruppano in zone ristrette Supporti utilizzati: su carta (non più in uso) su acetato di cellulosa su gel di agarosio su gel di poliacrilammide inerti setacci molecolari Monodimensionale o Bidimensionale Su colonna, capillare, continua, preparativa: necessitano di apparecchiature particolari

TECNICHE ELETTROFORETICHE APPARECCHIATURA Un alimentatore con potenza fino a 3000 V Una cella o vaschetta per elettroforesi: a sviluppo orizzontale a sviluppo verticale Una soluzione tampone opportuna Una soluzione per la colorazione delle zone Un indicatore di corsa (ad es. blu di bromofenolo) Eventualmente: Un apparato per la preparazione del gel Un apparato per la lettura e la quantificazione (densitometro)

TECNICHE ELETTROFORETICHE ELETTROFORESI SU ACETATO DI CELLULOSA Usata in analisi cliniche di routine: proteine sieriche lipoproteine ricerca di immunoglobuline anomali Tampone veronal-acetato ph 8.7 Corsa: 200 V per 30 min Fissaggio: TCA 10% Colorazione: Rosso Ponceau o Amido Black 0.5% per 10-20 min

Elettroforesi su acetato di cellulosa Le proteine totali nel sangue si possono dosare sia su plasma che su siero (per il plasma, la proteinemia totale è più alta del 3-5% per la presenza del fibrinogeno) Variabilità legata all età ed al sesso, all attività fisica, alla postura, ai ritmi cronobiologici Le plasmaproteine vengono sintetizzate principalmente dal fegato, in particolare l albumina, il fibrinogeno e le globuline, ad eccezione delle immunoglobuline che vengono prodotte dal sistema immunitario (plasmacellule). Contribuiscono alla sintesi anche l intestino per le lipoproteine ed il sistema monocito/macrofagico per alcuni fattori del complemento. I livelli plasmatici fisiologici dipendono dalla sintesi, dal catabolismo, dalla diminuzione delle proteine nei vari compartimenti corporei e da perdite esterne. Il metabolismo delle proteine è rapido ed intenso: viene giornalmente rinnovato, in condizioni fisiologiche, il 9% di tutte le proteine sintetizzate dal fegato ed il 10-25% di quelle circolanti.

Elettroforesi su acetato di cellulosa + - mobilità anodica Valori normali (%): Albumina : 52 68 Alpha 1 : 2,4 5.3 Alpha 2 : 6,6 13,5 Beta : 8,5 14,5 Gamma : 10,7 21

Elettroforesi su acetato di cellulosa PARAMETRI NORMALI Banda prealbumina prealbumina BANDA A Albumina 55-66% BANDA α 1 BANDA α 2 α 1 Antitripsina (lipoproteine HDL, fetoproteina4 antichimotripsina, glicoproteina acida) α 2 Macroglobulina (anodica) aptoglobina (catodica) 4-8 % 5-10% BANDA β (ceruloplasmina,) ( 1 ) transferrina (anodica) (β1-lipoproteine (LDL) 8-14% ( 2 ) C3 complemento (catodica) (emopessina, β2-microglobulina) BANDA γ Immunoglobuline 9-18%

Elettroforesi su acetato di cellulosa

Elettroforesi su acetato di cellulosa PREALBUMINA E la banda più anodica E di sintesi epatica PM 54-61 kda Struttura tetramerica Possiede un sito di legame per la tiroxina Emivita di 2 giorni Si riduce nelle epatopatie e nelle reazioni infiammatorie e nella denutrizione Aumenta nella nefrosi Valori di riferimento 10-40 mg/dl

Elettroforesi su acetato di cellulosa ALBUMINA PM circa 66 kda Singola catena polipeptidica e struttura secondaria stabilizzata da ponti disolfuro Emivita 20 giorni E la proteina plasmatica maggiormente responsabile della pressione colloido-osmotica del sangue (80%) Proteina di trasporto a bassa specificità ed affinità: metalli sostanze fisiologiche (ormoni, vitamine, bilirubina, ac. grassi), farmaci Una diminuzione della sintesi può essere causata da processi infiammatori, da malattie croniche ed acute del fegato; da fattori tossici endogeni ed esogeni; da malnutrizione e malassorbimento Concentrazione plasmatica 35-55 g/l

Elettroforesi su acetato di cellulosa IPOALBUMINEMIA (<32 g/l) Perdita (nefrite, ustioni, dermatiti, attraverso il tubo digerente) Apporto inadeguato (stati tumorali, vomito, malassorbimento, fistole intestinali, coliti ulcerose, enteriti, etc.) Diminuita sintesi (malattie epatiche croniche) Aumento del catabolismo (ipertiroidismo, diabete scompensato, traumi, malattie febbrili prolungate ) Situazioni fisiologiche (gravidanza, lattazione) Cause aspecifiche (diluizioni, clinostatismo) IPERALBUMINEMIE Fenomeno molto raro dovuto principalmente a disidratazione

Elettroforesi su acetato di cellulosa BISALBUMINEMIA Varianti genetiche dell albumina visibili per la presenza di due bande, una con la stessa mobilità dell albumina normale, l altra con mobilità anodica (variante fast) o più catodica (variante slow) negli stati eterozigoti. Al densitogramma la bisalbuminemia appare come un picco bicuspidato.

Elettroforesi su acetato di cellulosa α 1 -ANTITRIPSINA Glicoproteina sintetizzata nel fegato, è un inibitore delle serin proteasi L Alfa1-Antitripsina, sebbene prodotta dal fegato, esplica il suo principale effetto protettivo a livello dei polmoni. Agisce come inibitore della tripsina pancreatica, della chimotripsina, della trombina, della proteina C attivata, dei fattori XI e XIII. Inibitore delle proteasi sieriche extracellulari (collagenasi, elastasi) liberate localmente in corso di processi infiammatori

Elettroforesi su acetato di cellulosa α 2 --MACROGLOBULINA Glicoproteina sintetizzata dal fegato. Inibitore di proteasi, ma aspecifico. Agisce solamente nel sangue e non nei tessuti a causa delle sue grosse dimensioni. Modulatore dell attività delle citochine. Aumenta fisiologicamente nel 3 trimestre della gravidanza, nell infanzia e nell età avanzata. Aumenti patologici si hanno nell infiammazione acuta, nelle epatopatie, nel diabete.

Elettroforesi su acetato di cellulosa α 2 - APTOGLOBINA Glicoproteina capace di legare (in modo forte ed irreversibile) l emoglobina libera nel plasma: il complesso così formato è rapidamente intercettato ed eliminato dalle cellule del SRE Diminuisce in tutti i casi di emolisi intravascolare, per difetto di sintesi, per riduzione del numero di epatociti (anaptoglobinemia). Può diminuire anche in seguito a sport prolungati, che comportano distruzione di eritrociti.

Elettroforesi su acetato di cellulosa TRANSFERRINA Glicoproteina di sintesi epatica, PM 76 kda, lega 2 atomi di Fe 3+ ed è deputata al trasporto dalla sede di assorbimento alla sede di sintesi o di deposito. Aumenta negli stati ferrocarenziali, in gravidanza Diminuisce nelle anemie delle malattie croniche e nelle epatopatie Valori di riferimento 200-320 mg/dl

Elettroforesi su acetato di cellulosa Zona γ E costituita dalle diverse classi delle immunoglobuline, prodotte in seguito a infiammazioni croniche e in risposta ad agenti batterici, micotici, virali e parassitari. A causa della loro eterogeneità, le immunoglobuline si estendono dalla regione a quella e talvolta occupano anche la zona. Le Ig sono l espressione dell attività secretoria di diversi cloni plasmacellulari In ordine di frequenza nel siero si hanno: IgG, IgA, IgM, IgD, IgE Gli aumenti in altezza della curva delle gamma globuline (o la comparsa di picchi), dipendono da un aumentata produzione di immunoglobuline: L aumento policlonale di una classe di Ig si manifesta come un incremento di colore in zona - La presenza di una componente monoclonale si evidenzia con la comparsa in zona - di un picco estremamente alto, con base molto stretta, che rispecchia una produzione anticorpale massiva di un unico tipo di anticorpo

Elettroforesi su acetato di cellulosa Una loro aumentata sintesi può essere dovuta a tumori a carico delle cellule linfoidi (linfociti B e plasmacellule), quali leucemie, linfomi, mielomi e plasmocitomi extramidollari. La diminuzione, oltre che per condizioni da perdita (vedi albumina), può dipendere da ipoplasie o aplasie linfoidi (ereditarie o acquisite). Il mieloma multiplo è la forma più comune di neoplasia plasmacellulare nell uomo. Produce in genere un immunoglobulina monoclonale ed un eccesso di catene leggere libere. Le Ig possono appartenere a tutte le classi di Ig con frequenza corrispondente al loro normale contenuto sierico

Elettroforesi su gel di agarosio ELETTROFORESI SU GEL DI AGAROSIO Polisaccaride dell agar, materiale isolato da alghe; è un polimero lineare e neutro formato da unità di D-galattosio e di 3,6-anidro-L-galattosio legate alternativamente con legami glicosidici: Si presenta come una polvere biancastra insolubile in acqua fredda Si prepara scaldando all ebollizione una sospensione acquosa di agarosio, sino a chiarificazione; si lascia, quindi, raffreddare. Intorno ai 45 si ha la formazione del gel, i cui pori sono di dimensione inversamente proporzionale alla concentrazione dell agarosio Usato sia per la separazione proteica che per l elettroforesi di acidi nucleici (DNA e RNA)

Elettroforesi su gel di agarosio

Elettroforesi su gel di agarosio Per l analisi di proteine sieriche, si usa generalmente una soluzione 0,8% di agarosio in tampone a ph 8.7, versata su lastra di vetro e lasciata raffreddare Campione diluito 1:1 con il tampone contenente 0,1% di blu di bromofenolo (indicatore della corsa); inserito in una sottile fessura nel gel e fatto assorbire prima di applicare la corrente Corsa 20 V/cm, per 30 min Fissaggio del gel con soluzione 80% acido picrico - 20% acido acetico Colorazione gel con 0,1% Blue Comassie in metanolo acqua acido acetico (45:45:10 in volume)

Elettroforesi su gel di agarosio 1 2 3

Elettroforesi su gel di agarosio 4 5 6 7

Elettroforesi su gel di agarosio 8 9 10

Elettroforesi su gel di agarosio 11 12

Elettroforesi su gel di agarosio 13 14

Transilluminatore UV Elettroforesi su gel di agarosio

Elettroforesi su gel di agarosio Etidio Bromuro (EtBr): Colorante fluorescente che assorbe la luce UV a 254 nm e riemette in fluorescenza a 590 nm, dando colore giallo-arancio E utile sia per visualizzare, sia per quantificare il campione di DNA: l intensità della fluorescenza è, infatti, proporzionale alla quantità del campione.

Elettroforesi su gel di agarosio Markers Per frammenti lineari di DNA e/o RNA la distanza di migrazione è inversamente proporzionale alle dimensioni della molecola (ovvero alla sua lunghezza in basi)

Elettroforesi su gel di agarosio

Elettroforesi su gel di poliacrilammide ELETTROFORESI SU GEL DI POLIACRILAMMIDE La PAGE, polyacrylamide gel electrophoresis, è una delle metodiche elettroforetiche più utilizzate; I gel di poliacrilammide sono preparati facendo copolimerizzare monomeri di acrilammide in presenza di piccole quantità di N,N -metilene bisacrilammide (bisacrilamide) Acrilammide Bis-acrilammide

Elettroforesi su gel di poliacrilammide La bis-acrilammide, composta da due molecole di acrilammide legate da un gruppo metilene, è utilizzata come agente in grado di formare legami crociati (cross-linking agent) I monomeri di acrilammide polimerizzano nel senso testa-coda e occasionalmente si legano ad una molecola di bis-acrilammide. Il processo di polimerizzazione dell acrilammide avviene per catalisi radicalica ed inizia con l aggiunta di ammonio persolfato, (NH4) 2 S 2 O 8 (iniziatore) e della base N,N,N,N -tetrametilendiammina (TEMED, catalizzatore). Il TEMED decompone lo ione persolfato dando origine al radicale libero SO - 4, che innesca la polimerizzazione: R + M RM RM + M RMM RMM + M RMMM ecc.

Elettroforesi su gel di poliacrilammide

Elettroforesi su gel di poliacrilammide La poliacrilammide è il polimero più utilizzato per la elettroforesi di proteine con PM tra 5.000 e 200.000 I suoi vantaggi sono: notevole resistenza meccanica sia quando i gel sono idratati che quando vengono seccati; completa trasparenza sia nel visibile che nell UV, che resta anche quando i gel sono seccati; aderisce bene al vetro evitando che si creino vie preferenziali; La sua porosità può essere controllata: si può modulare l effetto di setaccio molecolare (6% 20% acrilammide); E utilizzabile per la elettroforesi sia nativa che denaturante; il monomero e una potente neurotossina!!!

Elettroforesi su gel di poliacrilammide Si può modulare la dimensione media dei pori, variando la percentuale di acrilammide (in genere la percentuale di bisacrilammide è lasciata costante), come in altri SETACCI MOLECOLARI: Proteine relativamente piccole Proteine relativamente grandi migrazione più veloce migrazione più lenta % ACRILAMMIDE bassa SEPARAZIONE MOLECOLE ALTO PM % ACRILAMMIDE alta SEPARAZIONE MOLECOLE BASSO PM

Elettroforesi su gel di poliacrilammide

Elettroforesi su gel di poliacrilammide

SDS-PAGE La SDS-PAGE prevede la separazione di miscele proteiche, non in base alla loro carica, ma alle loro dimensioni poiché l SDS (sodio dodecil-solfato) conferisce alle proteine una carica negativa netta, di densità omogenea ELETTROFORESI IN CONDIZIONI DENATURANTI Proteina SDS

SDS-PAGE Principali impieghi della SDS-PAGE: Proteomica (analisi dell insieme delle proteine di una cellula) Controllo di omogeneità (purificazione di proteine) Caratterizzazione (determinazione del peso molecolare) Analisi con anticorpi (western blotting)

SDS-PAGE La parte superiore del gel di poliacrilammide, nota come stacking gel (o GEL DI CONCENTRAZIONE), SEPARAZIONE) è versata direttamente al di sopra del resolving gel (o GEL DI Lo stacking gel ha delle proprietà che consentono la concentrazione delle proteine del campione in una zona sottile al di sopra del resolving gel In tal modo le proteine rivestite da SDS sono separate nel resolving gel in maniera efficace e riproducibile Lo stacking gel è polimerizzato con una piccola percentuale di acrilammide e di bis-acrilammide, per assicurare un alta porosità, ed è tamponato con Tris-HCl a ph 6,8 Il resolving gel contiene invece una percentuale più alta di acrilammide ed è tamponato con Tris-HCl a ph 8.8 Il tampone di corsa contiene Tris a ph 8.3, con Glicina come controione

SDS-PAGE FASI PROCEDURALI Preparazione delle soluzioni Preparazione del gel (casting): continuo discontinuo a gradiente Preparazione del campione (aggiunta Sample Buffer) Corsa elettroforetica Metodo di rivelazione Recupero (eventuale)

SDS-PAGE % crescente

SDS-PAGE PREPARAZIONE DEL CAMPIONE - FUNZIONI DEL SAMPLE BUFFER SDS denatura le proteine (stessa forma a bastoncino ) conferisce la stessa densità di carica (negativa) β-mercaptoetanolo (HS-CH2CH2OH) (agente riducente) rompe eventuali legami disolfuro Glicerolo appesantisce i campioni, depositandoli nel pozzetto Blu di bromofenolo (indicatore della corsa) visualizza i campioni e va a costituire il fronte di migrazione Bollitura (100 C per 5 min) accelera la completa denaturazione e quindi l inattivazione

SDS-PAGE Riduzione proteica da parte del β-mercaptoetanolo Perdita della struttura terziaria e quaternaria delle proteine

SDS-PAGE

SDS-PAGE

MARKERS SDS-PAGE

SDS-PAGE RIVELAZIONE DELLE PROTEINE COLORANTI ASPECIFICI: Blue Coomassie (sensibilità 100 ng) Silver Staining (sensibilità 1 ng)

SDS-PAGE IMMUNODECORAZIONE (WESTERN BLOTTING): IDENTIFICAZIONE CON ANTICORPI SPECIFICI

SDS-PAGE COLORANTI SPECIFICI (ZIMOGRAMMI) (proteine native) (es., proteasi, fosfatasi, deidrogenasi)

SDS-PAGE Vantaggi: I complessi proteina-sds sono altamente carichi e tutti negativi (vanno tutti all anodo) Si separano in base alla dimensione consentendo la determinazione del PM SDS solubilizza quasi tutte le proteine Le bande si fissano e si colorano facilmente Svantaggi: Glicoproteine possono migrare in modo anomalo Proteine basiche o di membrana migrano in modo anomalo e/o si solubilizzano male

ISOELETTROFOCALIZZAZIONE (IEF) FOCALIZZARE (CONCENTRARE) NEL MEDESIMO PUNTO PROTEINE CON MEDESIMO pi Metodica introdotta nel 1965 La separazione proteica non avviene in un tampone a ph definito, bensì in un mezzo nel quale è presente un gradiente di ph, crescente dall anodo (ambiente acido) al catodo (ambiente basico) La separazione delle proteine avviene, quindi, non sulla base del differente PM, bensì sulla base del differente punto isoelettrico E basata sull uso di polielettroliti anfoteri, (es. poliammine policarbossiliche) denominati ampholine, posti in commercio con varie denominazioni (Ampholyte, Bio-Lyte, Pharmalyte), che copolimerizzano in un gel di acrilammide, garantendo il gradiente di ph

ISOELETTROFOCALIZZAZIONE (IEF) Le proteine sono molecole anfotere, che portano una carica netta positiva, negativa o pari a zero a seconda del valore di ph dell ambiente in cui si trovano: In un gradiente di ph e sotto l azione di un campo elettrico, ogni proteina della miscela si muoverà fino ad incontrare un valore di ph = pi

ISOELETTROFOCALIZZAZIONE (IEF) Un gradiente di ph immobilizzato si forma legando covalentemente gruppi tamponanti acidi o basici ad una matrice polimerica (acrilammide) (IMMOBILINE DRY STRIP)

ISOELETTROFOCALIZZAZIONE (IEF)

ISOELETTROFOCALIZZAZIONE (IEF) Eccellente risoluzione (ΔpI < 0,01 unità di ph), bande molto nette e sensibilità elevate; Largo intervallo di pi; Alto voltaggio (generalmente > 1000 V)

ELETTROFORESI BIDIMENSIONALE (2D-PAGE) Combina le caratteristiche della IEF, nella quale le proteine sono separate in base alla loro carica, con quella della SDS-PAGE classica, in cui le proteine sono separate in base alla loro massa. Tale combinazione consente di disporre di uno dei metodi analitici più sofisticati per la separazione di miscele proteiche complesse 1 GEL: IEF su gel di poliacrilammide (IPG), con separazione proteica in base al diverso pi. Terminata la separazione la strip è incubata con SDS; 2 GEL: il 1 GEL è posizionato adiacente ad un SDS-PAGE, fissato versando dell agarosio sciolto nel tampone di corsa. Solidificato l agarosio, può iniziare l elettroforesi nella seconda dimensione e le proteine legate all SDS entrano nel 2 gel e si separano sulla base del diverso peso molecolare.

ELETTROFORESI BIDIMENSIONALE (2D-PAGE) E possibile risolvere fino a 20000 proteine contenute in un estratto cellulare

ELETTROFORESI BIDIMENSIONALE (2D-PAGE)

ELETTROFORESI BIDIMENSIONALE (2D-PAGE)

APPLICAZIONI IN BIOCHIMICA CLINICA ELETTROFORESI: Mieloma multiplo (γ-globuline) Gammopatie policlonali (β- e γ-globuline) Dislipoproteinemie (lipoproteine) Emoglobine normali e patologiche Composizione isoenzimatica dei liquidi biologici (siero, urine, saliva ecc.)

APPLICAZIONI IN BIOCHIMICA CLINICA