WESTERN BLOT o IMMUNOFISSAZIONE

BLOTTING Trasferimento di macromolecole su una membrana immobilizzante. Southern DNA - da Edward Southern 1970 Northern Western RNA Proteine

SCOPO DEL WESTERN BLOTTING Consente la ricerca dell ago nel pagliaio!

SCOPO DEL WESTERN BLOTTING Perché non si addiziona l Ab direttamente al gel? Consente la ricerca dell ago nel pagliaio!

WESTERN BLOTTING (WB) MEMBRANE Trasferimento su membrana immobilizzanti per rendere più accessibile la proteina (Ag) all anticorpo (Ab). Nitrocellulosa PVDF Nylon

FASE DI TRASFERIMENTO (BLOTTING) ELETTROBLOTTING ANODO (+) CATODO (-) SPUGNA MEMBRANA DI NITROCELLULOSA CARTA ASSORBENTE GEL DI PAA (POLIACRILAMIDE)

STRUMENTI PER L ELETTROBLOTTING Perché una vaschetta di ghiaccio? Generatore di DDP Sistema elettroforetico

Esempio di separazione elettroforetica di proteine per SDS-PAGE (Western Blotting) Ordine campioni: 1) Marker, 2) BSA 0.78 um, 3) 1.56 um, 4) 3.12 um, 5) 6.25 um, 6) 12.5 um, 7) 25 um, 8) 0, 9) 50 um (33 ug in 10 ul) 10) 0. Volume di caricamento: 10-25 ul. Colorazione con Ponceau S. - Corsa: 0.1 A fino a max 200 Volt, 120 min. - Trasferimento: 0.45 A, 100 Volt 120 min.

Elettroforesi WESTERN BLOTTING (WB) Questo sistema unisce: - La risoluzione delle separazioni elettroforetiche - La sensibilità delle rivelazioni immunochimiche Miscela di proteine Blotting A Incubazione con Ab marcato anti-a SDS-Page B Filtro Autoradiogrammi Incubazione con Ab marcato anti-b

STEP SPERIMENTALI Preparazione del campione Separazione elettroforetica Trasferimento delle proteine dal gel alla membrana immobilizzante, tramite un campo elettrico perpendicolare. Tampone di trasferimento: Tris 25 mm Glicina 190 mm SDS 1% Metanolo 20%

STEP SPERIMENTALI Saturazione della membrana con una soluzione proteica (BSA o caseina del latte) Aggiunta dell anticorpo 1 ario specifico e lavaggio dell eccesso Aggiunta dell anticorpo 2 ario marcato (meno specifico) e lavaggio dell eccesso Rivelazione (dipende dal tipo di marcatura)

AZIONE DEGLI ANTICORPI NEL WB 1. Antigene proteico. 2. Anticorpo 1 ario (specifico). 3. Anticorpo 2 ario marcato. 4. Enzima marcatore. S P : substrato per l enzima, convertito in un prodotto rilevabile.

Perossidasi di rafano (Horseradish- HRP)

RIVELAZIONE NEL WESTERN BLOTTING Perossidasi = usando H 2 O 2 come substrato, ossida il 3-N-9-etilcarbazolo a prodotto insolubile e marrone. Consente la visualizzazione dell ago nel pagliaio!

Luminolo

ECL (Enhanced ChemiLuminescence) Enzima marcatore = Perossidasi (HRP) Substrato = Luminolo In presenza di perossidasi e H 2 O 2 il luminolo viene ossidato: si produce luce, la cui intensità può esser aumentata di 1000 volte con un intensificatore chimico.

REAZIONE DEL LUMINOLO Il luminolo può dar reazioni chemioluminescenti ad alta efficienza. Perossidasi Luminolo + 2 H 2 O 2 + OH- --------------> Amminoftalato + N 2 + 3 H 2 O + LUCE Il meccanismo esatto della reazione non è ancora stato completamente chiarito; il luminolo reagisce con un ossidante in presenza di un catalizzatore (perossidasi, microperossidasi Fe(CN) ) per formare un intermedio (idroperossido o ciclo perossido). Questo si decompone nello ione amminoftalato, in uno stato elettronicamente eccitato, che decade allo stato fondamentale con emissione di luce bluastra (425 nm).

Luce RIVELAZIONE NEL WESTERN BLOTTING Il substrato metabolizzato dalla perossidasi emette luce che impressiona una lastra. Emissione di circa 30 Tempo

ESPOSIZIONE DELLE LASTRE Sviluppo e fissaggio Dark room Esposizione manuale Sviluppatrice

RISULTATO DI UN WB Da cosa dipende l intensità delle bande? Cosa c è di troppo?

CONFRONTO SDS-PAGE E WESTERN BLOT

OTTIMIZZAZIONE

OTTIMIZZARE UN WESTERN BLOT - TRASFERIMENTO - SDS = agisce sulla proteina METANOLO = agisce sulla membrana DURATA DEL BLOT TIPO MEMBRANA PORI 0,22 µm (270 µg BSA/cm 2 ) 0,45 µm (100 µg BSA/cm 2 ) Meno proteine, ma meno background

COLLI DI BOTTIGLIA DI UN WB - Concentrazione delle proteine - Rimozione contaminanti Cosa limita un WB? Quantità e qualità del campione Qualità e quantità dell anticorpo

COLLI DI BOTTIGLIA DI UN WB - Concentrazione delle proteine - Rimozione contaminanti Cosa limita un WB? Quantità e qualità Eccessi del campione Qualità e quantità dell anticorpo

OTTIMIZZAZIONE DEGLI ANTICORPI Buono Migliorabile Tutto da rifare!

OTTIMIZZAZIONE DEGLI ANTICORPI Cross reazione Poco Ab 1 ario Ab 2 ario 1/100 Ab 2 ario 1/300 Ab 2 ario 1/1000 Ag frammentato ECCESSO DI Ab 2 ario

OTTIMIZZAZIONE DELLA RILEVAZIONE TEMPI DI ESPOSIZIONE 300 60 20 10 0s SOSTITUIRE L ENZIMA CONIUGATO ALL Ab SUBSTRATI CON SENSIBILITA DIVERSA

ESEMPI DI WB 130 110 80 55 50 35 M Dove si trovano le bande attese per i campioni? 1 2 3 4 5 6 7 8 1 2 3 4 5 6 7 8 - M 130 110 80 55 50 35 20 Banda attesa 60 kda + Banda attesa 40 kda 20

ESEMPI DI WB 130 110 80 55 50 35 M 1 2 3 4 5 6 7 8 1 2 3 4 5 6 7 8 - M 130 110 80 55 50 35 20 Banda attesa 60 kda + Banda attesa 40 kda 20

ESEMPI DI WB 130 110 80 55 50 35 M 1 2 3 4 5 6 7 8 1 2 3 4 5 6 7 8 - M 130 110 80 55 50 35 20 Banda attesa 50 kda + Banda attesa 40 kda 20

NECESSITA DI UN CONTROLLO POSITIVO Se non viene nemmeno il controllo positivo, non è detto che i vostri campioni non abbiano l antigene. 130 110 80 55 50 35 M 1 2 3 4 5 6 7 C+ 1 2 3 4 5 6 7 C+ - M 130 110 80 55 50 35 20 Banda attesa 35 kda + Banda attesa 35 kda 20

PROTEINA INDIPENDENTE 1 2 3 4 5 6 7 C+ M 1 2 3 4 5 6 7 C+ M 130 110 80 55 50 35 130 110 80 55 50 35 Banda attesa 35 kda 20 Banda attesa 35 kda 20 Necessaria per evidenziare errori di: caricamento, corsa, trasferimento, legame anticorpale, ecc.

DOT BLOT Tecnica in cui si affida il riconoscimento dell Ag alla sola selettività dell Ab, in assenza di una separazione elettroforetica preventiva.

DOT BLOT Ab 1/2000 Ab 1/2500 Ab 1/3000 Ab 1/4000 FIX 10 ng Den FIX 10 ng Rid FIX 1 ng Den FIX 1 ng Rid FIX 0.1 ng Den FIX 0.1 ng Rid SVANTAGGI Riconoscimento e legame più difficili. VANTAGGI Rapidità e semplicità di esecuzione. Non c è perdita di campione.

1 Gel di PAA per i laboratori Running gel (5 ml) finale 12% H 2 O TRIS 1,5 M ph 8,8 Acrilammide (40% 12%) SDS 10% APS 10% TEMED 2 Stacking gel (2 ml) finale 4% H 2 O TRIS 1,0 M ph 6,8 Acrilammide (40% 8%) SDS 10% APS 10% TEMED 2,1 (2,098) ml 1,3 ml 1,5 ml 50 ul 50 ul 2 ul 1508 ul 250 ul 200 ul 20 ul 20 ul 2 ul